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    科研服务

    立足于生命科学,为基础研究领域科学工作者提供生物学高端技术服务

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    酵母基因编辑

    南京瑞源生物基于CRISPR-Cas12a技术推出酵母基因编辑服务(包含单基因敲除、多基因敲除、基因插入)。与传统的TALEN(转录激活子样效应物核酸酶)以及ZNF(锌指核酸酶)技术相比,CRISPR-Cas12a技术能够实现更高效更灵活的基因编辑。

    • 产品描述
    • 服务简介

      南京瑞源生物基于CRISPR-Cas12a技术推出酵母基因编辑服务(包含单基因敲除、多基因敲除、基因插入)。与传统的TALEN(转录激活子样效应物核酸酶)以及ZNF(锌指核酸酶)技术相比,CRISPR-Cas12a技术能够实现更高效更灵活的基因编辑。

       

      技术原理

      CRISPR/Cas12a系统实现基因组编辑主要通过识别、切割和修复三个步骤完成。首先,CRISPR序列进行转录产生pre-RNA,Cas12a自行对pre-RNA加工切割生成成熟的crRNA,crRNA通过与核酸内切酶的WED、RuvC和REC2结构域以及两个Mg2+离子的相互作用形成单核酸酶效应复合物。效应复合物首先扫描5'-TTN-3'PAM位点,之后通过碱基互补配对原则使crRNA间隔序列与目标DNA同源序列结合,将Cas12a特定靶向结合到目标位点。然后Cas12a使用RuvC核酸内切酶结构域对DNA实现远离PAM交错切割,同时将PAM远端切割产物释放,产生长度为4~5nt突出的黏性末端缺口。随后,细胞启动修复机制以修复损伤缺口。NHEJ和HDR是真核细胞内主要的DSB修复机制,NHEJ可造成移码突变使基因功能失效,部分原核细胞缺乏NHEJ,但若添加外源修复模板(一般500~1000bp左右同源臂),也可通过HDR修复实现精准的基因插入或替换。

      图CRISPR/Cas12a基因编辑原理

      Swarts DC al et, 2017

       

      应用领域

      1、精准编辑酵母基因组中的目标基因,用于功能缺失研究。

      2、构建基因编辑菌株,用于代谢工程、表型分析或药物筛选。

      3、多基因协同编辑,研究基因互作或通路调控机制。

       

      服务优势

      精准编辑:基于最新Cas12技术进行酵母基因编辑,保障酵母基因编辑的准确性与重复性,降低脱靶效率。

      验证服务:提供PCR验证和测序服务,确保编辑效果。

      灵活设计:支持客户提供靶点序列或由我司设计sgRNA。

      快速交付:使用Cas12进行酵母编辑,高效、省时、省钱,它比常规基因编辑周期缩短30-50%;同时拥有常见酵母菌株的预转化Cas12载体库,缩短构建时间。

      一敲多用:可以实现从基础研究到工业菌株优化的全方位酵母基因编辑需求。

       

      服务内容

      项目

      周期

      步骤

      交付内容

      酵母基因敲除/敲入

      45个工作日

      1、CRISPR敲除/敲入靶点设计

      2、敲除/敲入模块构建

      3、载体构建

      4、基因编辑

      5、菌P验证

      6、测序鉴定

      7、阳性克隆扩增

      8、结果鉴定

      1、敲除/敲入成功的菌株甘油菌、平板

      2、测序文件

      3、电子版实验报告1份

       

       

      样本要求

      虚拟样品:

      1、目标基因名称及ID。

      2、基因编辑菌株基因组序列。

       

      实体样品:

      类型送样标准运输条件
      酵母菌株(客户提供)活菌数≥1×108 CFU/mL,无污染常温,48小时内送达
      质粒(sgRNA载体)浓度≥100ng/μL,体积≥20μL冰袋,72小时内送达
      甘油菌(保存菌种)体积≥500μL,无污染,标注抗性干冰,1-3天(按重量分级)
      平板菌无污染常温

       

      结题标准

      1、PCR验证目标基因编辑成功(提供电泳图)。

      2、测序结果确认编辑位点无误。

      3、交付基因编辑菌株及实验报告(含原始数据)。

       

      案例展示

      1、菌株表型验证图

       

      2、电转平板图

       

      3、PCR鉴定图

      4、敲除测序验证图

       

      参考文献

      1. Li ZH, Liu M, Lyu XM, Wang FQ, Wei DZ. CRISPR/Cpf1 facilitated large fragment deletion in Saccharomyces cerevisiae. J Basic Microbiol. 2018;58(12):1100-1104.
      2. Li, Z. H., Liu, M., Wang, F. Q., & Wei, D. Z. (2018). Cpf1-assisted efficient genomic integration of in vivo assembled DNA parts in Saccharomyces cerevisiae. Biotechnology letters, 40(8), 1253–1261.
      3. Verwaal, R., Buiting-Wiessenhaan, N., Dalhuijsen, S., & Roubos, J. A. (2018). CRISPR/Cpf1 enables fast and simple genome editing of Saccharomyces cerevisiae. Yeast (Chichester, England), 35(2), 201–211.
      4. Swiat, M. A., Dashko, S., den Ridder, M., Wijsman, M., van der Oost, J., Daran, J. M., & Daran-Lapujade, P. (2017). FnCpf1: a novel and efficient genome editing tool for Saccharomyces cerevisiae. Nucleic acids research, 45(21), 12585–12598.
      5. Chen, B. C., Chen, Y. Z., & Lin, H. Y. (2023). An Introduced RNA-Only Approach for Plasmid Curing via the CRISPR-Cpf1 System in Saccharomyces cerevisiae. Biomolecules, 13(10), 1561.

       

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